Сбор и транспортировка проб биологических материалов для бактериологического исследования

Реферат
Содержание скрыть

3. Оборудование и среды для взятия материала

  • 4. Техника взятия основных видов биологического материала
    • 4.1 Кровь
    • 4.2 Ликвор
    • 4.3 Отделяемое из верхних дыхательных путей
      • 4.3.1 Мазок со слизистых передних отделов полости носа
        • 4.3.2 Соскоб со слизистых передних отделов полости носа
        • 4.3.3 Слизь из носоглотки и носа
        • 4.3.4 Слизь с задней стенки глотки
        • 4.3.5 Слизь с задней стенки глотки
        • 4.3.6 Назальный смыв
        • 4.3.7 Аспират из придаточных пазух
    • 4.4 Отделяемое из нижних отделов дыхательных путей
      • 4.4.1 Мокрота
        • 4.4.2 Промывные воды бронхов
        • 4.4.3 Пробы, полученные с использованием бронхоскопа
    • 4.5 Желчь
    • 4.6 Моча
    • 4.7 Отделяемое из мочеполовых органов мужчин и женщин
      • 4.7.1 Твердый шанкр, папулы, розеолы
        • 4.7.2 Материал из уретры
    • 4.8 Материал из половых органов у мужчин
      • 4.8.1 Язва полового члена
        • 4.8.2 Материал из простаты
        • 4.8.3 Материал из яичка, его придатков и паховых лимфатических узлов
    • 4.9 Отделяемое женских половых органов
      • 4.9.1 Материал из влагалища
        • 4.9.2 Материал из цервикального канала
    • 4.10 Раневые (хирургические) инфекции
    • 4.11 Пробы при воспалительных заболеваниях глаз
      • 4.11.1 Материал с конъюнктивы
        • 4.11.2 Соскоб с роговицы
        • 4.11.3 Смыв с контактных линз
    • 4.12 Пробы при воспалительных заболеваниях органов слуха
      • 4.12.1 Отделяемое из наружного слухового прохода
        • 4.12.2 Жидкость при тимпаноцентезе
    • 4.13 Инфекции в стоматологии
      • 4.13.1 Содержимое из зубодесневого кармана
    • 4.14 Пробы испражнений
      • 4.14.1 Нативные испражнения
        • 4.14.2 Ректальные мазки (Rectal swabs)
  • 5. Особенности взятия материала и оформления направления на исследование при некоторых клинических ситуациях
    • 5.1 Оформление направлений на исследование
    • 5.2 Взятие материала для выявления стрептококков группы В
    • 5.3 Взятие материала для диагностики дисбактериоза и заболеваний, вызываемых условно-патогеными бактериями
    • 5.4 Взятие материала при подозрении на холеру по МУ 4.2.1097-02
    • 5.5 Взятие рвотных масс и промывных вод
    • 5.6 Взятие биоптата для исследования на хеликобактер
    • 5.7 Взятие материала при подозрении на интранатальную инфекцию
    • 5.8 Грудное молоко
    • 5.9 Серодиагностика
    • 5.10 Взятие крови из вены
    • 5.11 Взятие крови с помощью вакуумной системы
    • 5.12 Взятие крови с помощью шприца
    • 5.13 Получение сыворотки из венозной крови
    • 5.14 Взятие папиллярной крови для постановки микрореакции преципитации с целью диагностики сифилиса
  • Заключение
  • Список использованных источников
  • [Электронный ресурс]//URL: https://drprom.ru/referat/sbor-hranenie-i-transportirovka-materiala-dlya-mikrobiologicheskih-issledovaniy/

    5 стр., 2249 слов

    Правила подготовки к лабораторным исследованиям крови. Условия ...

    ... Взятие материала следует производить в резиновых перчатках, соблюдая правила асептики. Для взятия пробы капиллярной крови Кровь ... использования 1 или 2 способа взятия крови в лаборатории заранее готовятся следующие пробирки с: ... крови в игле, и гемолиз, вызванный двукратным прохождением крови через иглу. При необходимости заполнить кровью несколько пробирок увеличивается длительность забора крови. ...

    4.1 Кровь

    Показания к проведению исследования: клиническая картина сепсиса; лихорадочные состояния неустановленной этиологии; пневмонии; подозрение на инфекционные заболевания: брюшной тиф и паратифы, сальмонеллезы, бруцеллез, возвратный тиф, лептоспирозы, малярия, эпидемический менингит, пневмококковые инфекции, пищевые токсикоинфекции (при наличии лихорадки), стафилококковые и стрептококковые инфекции, сибирская язва, туляремия, чума.

    Количество независимо отбираемых проб крови и время их взятия определяется лечащим врачом (табл. 1).

    Как правило, должны исследоваться не менее 2—3 проб крови, каждая из которых взята путем отдельной венепункции. Это необходимо для дифференциации истинной бактериемии от случайной контаминации крови при венепункции. Вероятность загрязнения вследствие случайного прокола сальной или потовой железы составляет 3%.

    Таблица 1. Рекомендуемое число отбираемых проб крови в зависимости от клинической ситуации

    Клиническое состояние

    Кол-во

    проб

    Примечание

    Острый сепсис, менингит, менингококоцемия, остеомиелит, артрит, острая пневмония, пиелонефрит

    2

    из двух сосудов или двух участков кровеносного сосуда перед началом антибактериальной терапии

    Лихорадка неясного генеза

    4

    сначала 2 пробы из разных кровеносных сосудов (двух участков сосуда), затем через 24—36 ч. еще 2 пробы

    Эндокардит, вялотекущий сепсис:

    в период обострения при подостром или вялотекущем течении

    2 — 3(6)

    из двух сосудов или двух участков кровеносного сосуда первые 1— 2 часа подъема температуры тела, до начала терапии сначала 3 пробы с интервалом 15 мин. и более. Если они отрицательны, на вторые сутки собирают еще 3

    Эндокардиты у пациентов:

    получающих антибактериальную терапию на фоне антибиотикотерапии

    6

    по 2 отдельные пробы в течение трех дней в течение 48 ч

    У больных, получающих антибактериальные препараты, пробы необходимо собирать непосредственно перед введением следующей дозы препарата. При наличии лихорадки оптимальным является взятие крови на фоне повышения температуры тела (но не на пике температуры!).

    Необходимое оснащение.

    1. Шприцы одноразовые 20-граммовые (для детей 10-граммовые) с иглами для венепункции. Запрещается использовать шприцы со «стерильного стола» в перевязочной, проверять проходимость иглы, просасывая через нее воздух.

    2. Флаконы с питательными средами: среда для аэробов и факультативных анаэробов + среда для облигатных анаэробов (например, двойная среда + среда СКС) или универсальная среда для аэробов и анаэробов. Предпочтительно использовать промышленно произведенные среды, разрешенные к применению. При использовании изготовленной в лаборатории среды СКС в качестве индикатора анаэробиоза в нее добавляют резазурин, который краснеет в присутствии кислорода. В случае покраснения более 20% верхней части столбика среду регенерируют прогреванием в течение 20 минут в кипящей водяной бане. Регенерацию можно провести лишь однократно. При отсутствии резазурина среду регенерируют перед посевом в обязательном порядке. Оптимальным средством отбора пробы венозной крови являются вакуумные двухфазные флаконы к аппарату Бактек (Bactec).

    3. 70° этиловый спирт.

    4. 2% или 5% настойка йода.

    5. Венозный жгут.

    6. Резиновые (латексные, виниловые) перчатки.

    7. Спиртовка (только при использовании флаконов со средами, изготовленными в лаборатории).

    , Взятие исследуемого материала.

    Манипуляции проводят с соблюдением правил асептики. Кровь берут у постели больного или в перевязочной (процедурной) и тут же засевают на питательные среды. Рекомендуется осуществлять эти процедуры вдвоем. Один медицинский работник проводит обработку кожи больного, венепункцию и взятие крови, второй, в это время открывает над пламенем спиртовки пробки флаконов со средами, подставляет их под струю крови из шприца, обжигает горлышки флаконов и закрывает их.

    Кровь для исследования получают путем венепункции.

    Порядок обработки кожи и взятия крови следующий:

    1. кожу над пунктируемой веной обрабатывают 70° спиртом;

    2. наносят 2-5% йодную настойку, круговыми движениями, начиная от центра, в течение 30 сек.;

    3. после высыхания йодной настойки проводят венепункцию;

    4. пальпировать сосуд в районе введения иглы после обработки кожи нельзя;

    5. протирают кожу 70° спиртом.

    У взрослых кровь берут в объеме 10-20 мл, у детей — в зависимости от возраста.

    Сразу после взятия кровь засевают на питательные среды. Соотношение крови и среды должно быть 1/10—1/60 для устранения бактерицидного действия крови путем ее разведения. Техника посева зависит от вида используемых питательных сред.

    При использовании сред лабораторного приготовления, расфасованных во флаконы с целлюлозными (ватными) пробками, посев проводят следующим образом:

    • снимают иглу со шприца;
    • над пламенем спиртовки открывают флакон;
    • вносят половину крови из шприца во флакон;
    • обжигают горлышко и пробку флакона в пламени спиртовки;
    • закрывают флакон пробкой;
    • осторожно, чтобы не замочить пробку, перемешивают содержимое флакона круговыми движениями;
    • вторую порцию крови из шприца вносят во второй флакон, повторяя указанные операции.

    При использовании флаконов со средами промышленного изготовления во флаконах с резиновыми либо пластиковыми пробками:

    • при наличии на флаконах защитных колпачков их удаляют (отгибают), не открывая при этом пробки;
    • пробки флаконов обрабатывают 70% этиловым спиртом (использование йодной настойки определяется рекомендациями производителя сред);
    • кровь в равных объемах вносят в «аэробную» и «анаэробную» питательные среды, проколов при этом пробки флаконов. Если предполагается проведение бактериоскопического исследования, дополнительно готовят препарат «толстая капля» и мазок.

    Для приготовления мазка каплю крови диаметром 2—3 мм наносят на обезжиренное предметное стекло вблизи от торца. Перед каплей крови ставят под углом 45° одноразовый пластиковый шпатель для растяжки мазков или стекло со шлифованным краем и плавным движением равномерно распределяют материал по поверхности.

    Для приготовления препарата «толстая капля» на стекло наносят каплю крови диаметром около 5 мм и распределяют ее с помощью иглы или пипетки в диск диаметром 10—15 мм. Толщина капли должна позволять видеть через нее газетный шрифт. Иногда мазок и препарат «толстая» капля готовят на одном стекле. Для этого на поверхность приготовленного как описано выше мазка до его высыхания наносят еще одну каплю крови. Она, как правило, сама растекается в правильный диск необходимой толщины.

    Препараты высушивают («толстая капля» сохнет 2—3 часа) и доставляют в лабораторию в специальном планшете для хранения и транспортировки стекол с соблюдением необходимой осторожности. Посевы крови немедленно доставляют в лабораторию, оберегая от охлаждения.

    Бактериологическая лаборатория при исследовании посевов крови выдает отрицательный ответ в случае, если рост микроорганизмов не обнаружен в течение 10 дней инкубации. В случае наличия у больного подозрения на внутрисосудистую инфекцию или бруцеллез возникает необходимость пролонгированной (до 1 месяца) инкубации посевов. Это должно быть особо отмечено в направлении. Рутинный посев крови не обеспечивает выявления ряда микроорганизмов.

    4.2 Ликвор

    Показания к проведению исследования: подозрение на нейроинфекцию. При подозрении на гнойный менингит в обязательном порядке в лабораторию направляют:

    1. Ликвор для первичного посева, бактериоскопии и серологических исследований в количестве не менее 1,0 мл.

    2. Ликвор в 0,1% полужидком агаре (среда «обогащения»).

    3. «Толстая капля» крови для бактериоскопии.

    4. Кровь в жидкой питательной среде или в 0,1% полужидком агаре (среда обогащения) для бактериологического накопления культуры: 5,0 мл крови засевают в 50,0 мл среды обогащения.

    5. Кровь в количестве не менее 2-х мл для серологических исследований (РПГА, ВИЭФ, ЛА и др.).

    Необходимое оснащение:

    1. Игла для люмбальной пункции.

    2. Мандрены.

    3. Анестетик.

    4. 70° этиловый спирт.

    5. 2% или 5% настойка йода или другой антисептик, разрешенный к применению.

    6. Перевязочный материал.

    7. Стерильные пластиковые пробирки, лучше центрифужные с завинчивающимися крышками.

    8. Шоколадный агар (желательно).

    9. 0,1% полужидкий агар.

    Взятие исследуемого материала:

    Ликвор получают путем люмбальной пункции. Желательно взять материал сразу при поступлении больного в стационар, до начала лечения.

    Пункция и взятие материала проводятся с соблюдением всех правил асептики, персонал работает в масках.

    *Больной укладывается в положение на боку, головной конец кровати максимально опущен, голова прижата к груди, ноги — к животу, спина максимально согнута.

    Определяются необходимые для выбора места пункции анатомические ориентиры. Пункцию проводят между поясничными позвонками L3-L4, L4-L5 или пояснично-крестцовыми L5-S1.

    Обрабатывают область пункции сначала раствором антисептика, а затем 70° спиртом.

    *Пальпируют рукой в стерильных перчатках точку пункции и вводят раствор анестетика.

    Проводят пункцию иглой со вставленным мандреном до ощущения «провала».

    Извлекают мандрен.

    *Первую порцию ликвора берут в отдельную пробирку для проведения общего ликворологического исследования. Вторую порцию, предназначенную для бактериологического исследования, собирают в стерильную центрифужную пробирку с завинчивающейся крышкой.

    Согласно МУК 4.2.1887—04 ликвор после пункции распределяют следующим образом:

    • 1,0 мл направляют в клиническую лабораторию для проведения общего ликворологического и цитологического исследования;
    • 0,2 мл направляют для постановки полимеразной цепной реакции (ПЦР);
    • 1,0 мл направляют для первичного бактериологического посева (если не сделан в отделении при пункции), бактериоскопии и серологических исследований; для бактериологического и бактериоскопического исследований отбирается либо вторая порция ликвора, либо самая мутная из всех.

    Ее отбирают в стерильную, желательно центрифужную пробирку с завинчивающейся крышкой;

    • 0,5 мл засевают в чашку с «шоколадным» агаром непосредственно у постели больного. Далее чашку хранят в условиях термостата при 37°С до доставки в лабораторию;
    • 0,5 мл засевают в 5,0 мл 0,1% полужидкого питательного агара непосредственно у постели больного и далее хранят при +37°С в условиях термостата до доставки в лабораторию;

    Касаться руками краев канюли, иглы, пробирки, класть пробку — нельзя.

    Доставлять материал в бактериологическую лабораторию лучше в термостатированной переноске (сумке) на грелке с водой + 37—38°С; в отсутствие возможности немедленно доставить материал в лабораторию, его лучше поместить в транспортную систему со средой Эймс (с углем или без него) и тогда его можно хранить в термостате до 48 часов. Доставка материала в транспортной системе должна производиться также с обеспечением мер поддержания температуры +37°С.

    При необходимости проведения вирусологических исследований пробы ликвора в стерильной пластиковой пробирке помещают в холодильник при температуре +2…+8°С или замораживают.

    При получении материала пункцией боковых желудочков мозга, ликвор из шприца, предварительно сняв иглу, вносят в стерильную пробирку над пламенем спиртовки, обжигают горлышко стеклянной пробирки и пробку в пламени спиртовки.

    4.3 Отделяемое из верхних дыхательных путей

    Посев материала из глотки, носа и ротовой полости только на 5% кровяной агар. Основным возбудителем бактериальных инфекций верхних дыхательных путей, включая скарлатину, тонзиллиты, фарингиты и пр. является Streptococus pyogenes.

    Для выявления таких видов микроорганизмов, как менингококки, дифтерийная палочка, гемофильные бактерии, о необходимости которого врач должен проинформировать лабораторию, для посева будут использованы специальные питательные среды.

    Диагностика некоторых специфических форм ангин осуществляется с помощью бактериоскопического исследования. Микроскопия мазков необходима при диагностике ангины Людвига (тяжелая гнилостно-некротическая флегмона полости рта полимикробной этиологии) и ангины Симановского-Плаута-Венсана (некротическая ангина, вызываемая симбиозом Fusobacterium DPP. и Treponema vincentii).

    4.3.1 Мазок со слизистых передних отделов полости носа

    Показания к проведению исследования: диагностика стафилококкового бактерионосительства. , Необходимое оснащение: стерильный зонд-тампон из вискозы на пластиковой оси в пластиковой пробирке (тубсер).

    , Взятие исследуемого материала:

    Материал забирается одним сухим вискозным тампоном тубcера из двух носовых ходов, помещается обратно в стерильную сухую пластиковую пробирку и возможно быстро доставляется в лабораторию, так как должен быть засеян на питательные среды в течении. При отсутствии вышеупомянутых промышленно произведенных изделий для взятия материала можно использовать стерильный зонд-тампон в индивидуальной упаковке и стерильную емкость (пробирку) для его транспортировки в лабораторию (не более 2-х часов с момента взятия пробы).

    4.3.2 Соскоб со слизистых передних отделов полости носа

    Показания к проведению исследования: озена, риносклерома. , Необходимое оснащение:

    • Стерильная пластиковая бактериологическая петля или стерильный зонд-тампон в пластиковой пробирке (тубсер); или транспортная система со средой Стюарт или Эймс.
    • Носовое или носоглоточное зеркало.

    Взятие исследуемого материала:

    В случае инфильтрационной формы риносклеромы материал берут с помощью стерильной пластиковой бактериологической петли и носового или носоглоточного зеркала прямо с инфильтрированной слизистой, слегка повреждая ее. У больных озеной или атрофической формой риносклеромы взятие материала проводят петлей либо стерильным зондом-тампоном, причем последнее предпочтительнее. При всех видах и формах клебсиеллезной инфекции одновременно следует осуществлять забор материала из обеих половин носа и глотки, а при локализации процесса в гортани, трахее и бронхах — методом кашлевых пластинок.

    Материал доставляется в лабораторию в течение 2 часов.

    4.3.3 Слизь из носоглотки и носа , Показания к проведению исследования: подозрение на дифтерию. , Необходимое оснащение:

    1.Стерильные зонды-тампоны в сухой пластиковой пробирке (тубсеры) или сухие стерильные зонды-тампоны, вмонтированные в ватные или корковые пробки пробирок. Тампон должен иметь форму «капли», а не «веретена» и находясь в пробирке не касаться ее дна и стенок.

    ИЛИ

    2.Стерильные ватные тампоны, пропитанные 5% раствором глицерина в дистиллированной воде и простерилизованные автоклавированием.

    Взятие исследуемого материала:

    Материал забирают натощак или через 3—4 часа после еды; при антибиотикотерапии исследование проводят не ранее чем через 3 дня после отмены препарата;

    • Мазки с миндалин и из носа берут отдельными тампонами, при этом мазки из двух носовых ходов забирают одним тампоном;
    • если есть налеты, материал забирают с границы пораженных и здоровых тканей, слегка нажимая на них тампоном;
    • Материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 3 часов, либо сразу после взятия засеян на плотные и транспортные питательные среды.

    При транспортировке на дальние расстояния рекомендуется использовать транспортные системы со средой Стюарт или Эймс. Допускается использование зондов-тампонов, пропитанных 5% раствором глицерина в дистиллированной воде и простерилизованных автоклавированием. В холодное время года пробы при транспортировке следует оберегать от охлаждения, используя термостатированные сумки (контейнеры) с грелкой +37°С.

    4.3.4 Слизь с задней стенки глотки

    Показания к проведению исследования: подозрение на менингококковую инфекцию. , Необходимое оснащение:

    1. Транспортные системы со средой Эймс (с углем или без него)

    ИЛИ

    2. Стерильные «заднеглоточные» зонды-тампоны индивидуально упакованные или в стерильной пластиковой пробирке (тубсеры) на ручке из мягкой проволоки. Участок проводки с тамоном на расстоянии 3—4 см от конца изгибают под углом 120°. При использовании стерильных индивидуально упакованных зондов-тампонов ось тампона должна быть вмонтирована в целлюлозную (ватную) пробку пробирки.

    ИЛИ

    3. «Заднеглоточные» зонды-тампоны, пропитанные питательной средой с ристомицином, приготовленные в лаборатории (не обязательно).

    Сывороточный агар и сывороточный агар с линкомицином или разрешенная к применению транспортная система со средой (Эймс) или транспортная среда с линкомицином.

    Взятие исследуемого материала:

    1. для диагностики менингококковой инфекции забирают слизь с задней стенки глотки; материал забирают натощак или через 3—4 часа после еды;

    2. шпателем надавливают на корень языка; в этот момент небная занавеска приподнимается; тампон заводят за мягкое небо и 2-3 раза проводят по задней стенке носоглотки; при извлечении тампон не должен касаться зубов, слизистой щек, языка и язычка;

    3. при использовании транспортных систем, разрешенных к применению, ось тампона сгибают под необходимым углом, придерживая его внутри стерильной упаковки; взятый материал помещают в термостатированную сумку с грелкой и доставляют в лабораторию в течение не более чем 5 часов, где материал либо засевают в чашки Петри, либо хранят в термостате, но не более 48 часов суммарно с момента взятия пробы;

    4. в отсутствии систем с транспортной средой зонд-тампон при извлечении из стерильной упаковки или пробирки сгибают под необходимым углом, опирая его о стенку пробирки или придерживая внутри стерильной упаковки; материал сразу же засевают на подогретые среды:

    • если время транспортировки до 3 часов — на сывороточный агар и сывороточный агар с линкомицином;
    • при посеве на среду в чашках Петри материал втирают на поверхности небольшого участка (1×2 см) среды всеми сторонами зонда-тампона, затем этим же тампоном засевают штрихами (с отрывом) по всей площади, отведенной для посева;
    • посевы следует беречь от охлаждения и транспортировать в переносных термостатах или сумках с грелками;
    • если время транспортировки более 3 часов, транспортную среду с линкомицином или другую, разрешенную к применению для этой цели, без спиртовки разливают по 1 мл в пробирки по числу обследуемых и затыкают пробками;
    • при посеве пробку открывают, тампон погружают в среду, предварительно слегка разогнув проволочную ручку о стенку пробирки;
    • закрывают пробирку пробкой и транспортируют в строго вертикальном положении при температуре не ниже 22°С.

    4.3.5 Слизь с задней стенки глотки

    Показания к проведению исследования: диагностика коклюша. , Необходимое оснащение:

    1. Транспортные системы со средами Стюарт или Эймс (с углем или без него).

    ИЛИ

    2. Стерильные «заднеглоточные» зонды-тампоны индивидуально упакованные или в стерильной пластиковой пробирке (тубсеры) на ручке из мягкой проволоки. Участок проволки с тамоном на расстоянии 3—4 см от конца изгибают под углом 90°. При использовании стерильных индивидуально упакованных зондов-тампонов ось тампона должна быть вмонтирована в целлюлозную (ватную) пробку пробирки.

    3 Стерильный физиологический раствор.

    4. Питательные среды (среда Борде-Жонгу, КУА или другие, разрешенные к применению).

    , Взятие исследуемого материала: , Исследуемым материалом могут служить мазки с задней стенки глотки, либо слизь, полученная методом кашлевых пластинок.

    1. мазки с задней стенки глотки берут с помощью изогнутых под прямым углом зондов-тампонов на оси из алюминиевой проволоки; при использовании транспортных систем, разрешенных к применению, ось тампона сгибают под необходимым углом, придерживая его внутри стерильной упаковки;

    2. в отсутствие транспортных систем одновременно рекомендуется использовать 2 тампона: сухой и увлажненный; сначала материал забирают сухим тампоном, а затем — тампоном, смоченным забуференным физиологическим раствором; материал, взятый с помощью сухого тампона, необходимо сразу засеять на питательные среды, а посев влажного тампона можно произвести уже в лаборатории;

    3. для диагностики коклюша, кроме исследования мазков из носоглотки, можно использовать метод кашлевых пластинок: при этом открытые чашки Петри с питательной средой удерживают в вертикальном положении на расстоянии 5—10 см ото рта на протяжении 5—6 кашлевых толчков.

    4.3.6 Назальный смыв

    Показания к проведению исследования: диагностика вирусных инфекций. , Необходимое оснащение:

    1. Стерильный физиологический раствор.

    2. Стерильный шприц 10 мл.

    3. Стерильный широкогорлый контейнер или 2 стерильные резиновые дренажные трубки и стерильные пробирки. , Взятие исследуемого материала:

    1. предупреждают пациента, чтобы он не сглатывал слюну до окончания процедуры;

    2. просят его откинуть голову назад под углом примерно 70° и удерживать в таком положении;

    3. вводят в каждую ноздрю по 5 мл стерильного физиологического раствора; пациент должен находиться в таком положении 3 — 5 секунд;

    4. опускают голову пациента вперед, чтобы жидкость вылилась из ноздрей в стерильный одноразовый контейнер или аспирируют жидкость введением резинового дренажа в каждую ноздрю.

    4.3.7 Аспират из придаточных пазух

    Показания к проведению исследования: диагностика синуситов. , Необходимое оснащение:

    1. Набор инструментов для проведения пункции пазухи.

    2. Стерильный шприц 10 мл.

    3. Транспортная система со средой Эймс или стерильная пробирка. , Взятие исследуемого материала:

    1. с соблюдением правил асептики пунктируют пазуху;

    2. аспирированную жидкость из шприца переливают в транспортную среду типа среды Эймс (допускается увлажнить жидкостью стерильный тампон и погрузить в транспортную среду);

    3. при отсутствии транспортной среды материал вносят в стерильную пробирку; в этом случае он должен быть доставлен в лабораторию немедленно.

    4.4 Отделяемое из нижних отделов дыхательных путей

    4.4.1 Мокрота

    Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания нижних отделов дыхательных путей, сопровождающиеся отделением мокроты; при подозрении на пневмонию в первые 3 дня заболевания целесообразно исследовать кровь.

    Необходимое оснащение: стерильный широкогорлый контейнер.

    Взятие исследуемого материала:

    1. предпочтительным является исследование утренней порции мокроты;

    2. перед сбором мокроты больному предлагают почистить зубы и. прополоскать рот кипяченой водой;

    3. его предупреждают о недопустимости попадания в мокроту слюны и носовой слизи;

    4. мокроту собирают в стерильный широкогорлый контейнер с завинчивающейся крышкой или стеклянную стерильную «карманную плевательницу».

    Микроскопическое исследование мокроты должно выполняться в обязательном порядке, так как позволяет оценить правильность взятия мокроты и через 1—2 часа поставить этиологический диагноз и осуществить выбор антимикробных препаратов.

    Особенности взятия мокроты для бактериоскопической диагностики туберкулеза.

    Мокрота собирается трижды. В первый день в присутствии медицинского работника, на второй день, проинструктированным больным самостоятельно. На третий день больной приносит собранную мокроту, и материал забирается в третий раз в присутствии медицинского работника.

    1. пациента предупреждают о важности получения именно мокроты, но не слюны или носовой слизи, о необходимости перед сбором материала почистить зубы и прополоскать рот теплой водой;

    2. медицинский работник в маске, резиновых перчатках и резиновом фартуке располагается за спиной пациента, таким образом, чтобы направление движения воздуха было от него к пациенту; он снимает крышку со стерильного широкогорлого контейнера для сбора мокроты и передает его пациенту;

    3. пациенту рекомендуют держать контейнер как можно ближе к губам и сразу же сплевывать в него мокроту по мере ее откашливания; кашель может быть индуцирован с помощью нескольких глубоких вдохов;

    4. по завершении сбора мокроты медицинский работник оценивает ее качество, плотно закрывает контейнер и заполняет направление на исследование; срок хранения материала в холодильнике без добавления консервирующих средств не должен превышать 48—72 часов;

    5. при отсутствии у пациента мокроты накануне вечером или рано утром, в день, намеченный для сбора материала, ему назначают отхаркивающее средство или раздражающие ингаляции; для проведения ингаляций используют раствор следующего состава: на 1 л стерильной дистиллированной воды 150 г хлорида натрия и 10 г бикарбоната натрия; больной должен вдохнуть от 30 до 60 мл подогретого до 43—45°С раствора в течение 10—15 минут (не менее); собранный таким образом материал не подлежит консервации и должен быть исследован в тот же день, поэтому в направлении обязательно отмечают, что материал был получен после ингаляции.

    4.4.2 Промывные воды бронхов

    Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания нижних отделов дыхательных путей при отсутствии мокроты.

    Необходимое оснащение:

    1. Стерильный физиологический раствор.

    2. Стерильный горловой шприц или аппарат Боброва.

    3. Стерильный широкогорлый контейнер. , Взятие исследуемого материала:

    Исследование промывных вод бронхов проводят при отсутствии или скудости мокроты. Это связано не только с технической сложностью взятия этого вида материала, но и с меньшей диагностической ценностью результата из-за значительного его разбавления (концентрация микроорганизмов в промывных водах в 10—1000 раз ниже чем в мокроте).

    Простейший метод взятия трахеобронхиального смыва: гортанным шприцем с помощью аппарата Боброва в трахею вводят около 10 мл стерильного физиологического раствора, и после возникновения кашля собирают откашлянный трахеобронхиальный смыв в стерильный широкогорлый контейнер. У маленьких детей через катетер вводят в трахею 5—10 мл физиологического раствора и затем отсасывают трахеобронхиальный смыв.

    Бронхиальные смывы могут быть получены при бронхоскопии. В том случае не рекомендуется вводить в бронх более 5 мл физиологического раствора.

    4.4.3 Пробы, полученные с использованием бронхоскопа

    Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания нижних отделов дыхательных путей при отсутствии мокроты.

    Необходимое оснащение:

    1. Бронхоскоп, другое оборудование и медикаменты, необходимое для проведения бронхоскопии.

    2. Стерильный физиологический раствор.

    3. Стерильные контейнеры и стерильные пробирки. , Взятие исследуемого материала: , С помощью бронхоскопии удается получить:

    1. бронхоальвеолярный лаваж (предпочтительно);

    2. смыв с бронхов (низкая чувствительность при диагностике пневмоний);

    3. соскоб с бронхов (более значим, чем смыв);

    4. биоптаты.

    Смыв с бронхов или получение бронхоальвеолярного лаважа проводят, вводя шприцем через биопсийный канал бронхоскопа отдельными порциями от 5—20 до 100 мл стерильного физиологического раствора. Перед введением каждой следующей порции отсасывают шприцом жидкость и переносят в стерильный контейнер. При этом для каждой новой порции используют новый контейнер. В дальнейшем по решению лечащего врача возможно объединение отдельных порций смыва, взятых в разных участках легких в одну. В направлении указывают общий объем введенного физиологического раствора.

    Таблица 4. Некоторые специальные методы диагностики заболеваний, обусловленных отдельными пневмотропными микроорганизмами

    Микроорганизм

    Специальные приемы выделения возбудителя или диагностики заболевания.

    Mycobacterium DPP.

    Бактериоскопия мазков из обогащенной флотацией мокроты, окрашенных флюорохромом в люминесцентном микроскопе. Посев специальным образом обработанной мокроты на среду Левенштейна-Иенсена. Биопроба.

    Chlamydia pneumoniae

    Заражение культур клеток (редко).

    Серодиагностика.

    Mycoplasma pneumoniae

    Индикация АГ в ИФА, выделение на элективных средах, серодиагностика.

    Legionella pneumoniae

    Посев на специальные питательные среды и биопроба (редко).

    Серодиагностика..

    Для получения соскоба с бронхов через биопсийный канал бронхоскопа вводят телескопический двойной катетер с обработанным полиэтиленгликолем (или другим соответствующим реактивом) дистальным концом для предотвращения контаминации пробы. Материал помещают в пробирку с тиогликолевой средой (средой СКС) или специальным консервантом для облигатных анаэробов.

    Биоптаты доставляют в лабораторию в двух небольших пробирках (типа Эппендорф), заполненных стерильным физиологическим раствором или тиогликолевой средой.

    4.5 Желчь

    Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания желчного пузыря и желчных протоков (холециститы, холангиты, желчнокаменная болезнь).

    При острых холангитах параллельно исследуют кровь. Диагностика брюшного тифа и брюшнотифозного бактерионосительства.

    Необходимое оснащение:

    Комплект для дуоденального зондирования. , Стерильные пробирки или стерильные контейнеры.

    Транспортная система для облигатных анаэробов (со средой Кери Блейр), разрешенная для применения в установленном порядке или пробирки с тиогликолевой средой, консервантом для облигатных анаэробов или стерильный шприц со стерильной резиновой пробкой (при взятии материала во время операции).

    Взятие исследуемого материала:

    желчь получают путем зондирования, реже, во время операции при пункции желчного пузыря;

    • при зондировании желчь собирают в 3 стерильные пробирки или в стерильные одноразовые контейнеры раздельно по порциям А, В, С (для бактериологического исследования предпочтительна проба В);
    • над пламенем спиртовки открывают пробирку или стерильный контейнер для сбора материала, 10—12 мл желчи помещают в стерильную емкость (у стеклянных пробирок обжигают горлышко и закрывают пробирку);
    • пробы должны быть доставлены в лабораторию в течение 1— 2 часов (исключая случаи использования транспортных систем со средой Кери Блейр, которые позволяют сохранять материал до 48 часов).

    При наличии у больного дренажа, собирают из него пробу шприцом, предварительно тщательно обработав участок, который будет подвергаться пунктированию. Нельзя собирать пробу желчи из дренажного мешка.

    Пробы желчи, а так же гноя и аспирата из печеночных абсцессов могут также отбираться во время операции. Материал из очага воспаления направляют в лабораторию в транспортной системе для анаэробов, разрешенной к применению в РФ или в полностью заполненном шприце, закрыв его конец стерильной резиновой пробкой.

    4.6 Моча

    Вне зависимости от способа получения мочи, она должна быть доставлена в лабораторию в течение 2 часов. В крайнем случае, допускается сохранение мочи в течение ночи в холодильнике. Следует помнить, что в зависимости от химического состава мочи, бактерии в ней могут при хранении как отмирать, так и размножаться. Пролонгация срока сохранения материала может крайне затруднить клиническую интерпретацию результата.

    Взятие средней порции мочи, прерванное мочеиспускание

    Показания к проведению исследования: подозрение на воспалительные заболевания почек и мочевого пузыря. Диагностика инфекционных заболеваний: брюшного тифа (с конца 2 недели заболевания), лептоспироза.

    Необходимое оснащение:

    1. Стерильный широкогорлый контейнер.

    2. Теплая вода.

    3. Мыло.

    4. Стерильные марлевые салфетки.

    5. Стерильный ватный тампон (для женщин).

    Взятие исследуемого материала: в стерильный контейнер собирают среднюю порцию свободно выпущенной мочи в количестве 3— 5 мл. Перед взятием материала больной должен совершить тщательный туалет наружных половых органов. Целесообразно напечатать инструкции на обратной стороне бланка направления. Рекомендуется женщинам сдавать 2—3 порции мочи в течение 2—3 дней и решение о диагностической значимости бактериурии принимать только по совокупности результатов. Ниже приводим варианты инструкций для пациентов.

    Для мужчин:

    Тщательно вымыть руки.

    2. Тщательно вымыть половой орган теплой водой с мылом и высушить стерильной салфеткой. , Обнажить головку полового члена (если не было обрезания) и выпустить небольшую порцию мочи. , Прервать мочеиспускание и выпустить порцию мочи в контейнер. , Закрыть контейнер и передать в лабораторию. , Для женщин: , Тщательно вымыть руки. , Вымыть половые органы, используя стерильные марлевые салфетки и теплую мыльную воду, в направлении спереди назад.

    Промыть половые органы еще раз теплой водой и вытереть стерильной салфеткой. Отверстие влагалища желательно закрыть стерильным ватным тампоном.

    На протяжении всей процедуры держать половые губы раздвинутыми.

    5.Помочиться, отбросив первую порцию мочи. Собрать порцию мочи в стерильный контейнер.

    6.Закрыть контейнер и передать в лабораторию. , Для маленьких детей: , Дать ребенку попить воды или другой жидкости, пригодной для питья. , Вымыть руки с мылом, сполоснуть водой, высушить.

    У девочек: тщательно промыть отверстие мочеиспускательного канала, а также промежность и область заднего прохода теплой мыльной водой или жидким мылом, сполоснуть теплой водой, высушить стерильной марлевой салфеткой.

    3. Усадить ребенка на колен и помощника.

    У мальчиков при мочеиспускании держите крайнюю плоть оттянутой для предотвращения контаминации пробы мочи микроорганизмами с кожи.

    Спустить небольшое количество мочи в специальную посуду для утилизации.

    Собрать среднюю порцию мочи (10-15 мл) в стерильный одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой. , Закрыть контейнер и передать в лабораторию , Взятие мочи катетером

    Показания к проведению исследования: отсутствие возможности получения мочи естественным путем; большая вариабельность получаемых результатов; необходимость дифференциации очага инфекции: мочевой пузырь или почки.

    Необходимое оснащение:

    1. Стерильный широкогорлый контейнер (банка).

    Теплая вода.

    Мыло.

    Стерильные марлевые салфетки (для женщин).

    Стерильный катетер.

    Резиновые перчатки.

    Взятие исследуемого материала:

    • перед катетеризацией, если мочевой пузырь заполнен, пациент должен его частично освободить;
    • необходимо провести туалет наружных половых органов теплой водой с мылом и высушить их стерильными марлевыми салфетками, после чего ввести катетер в мочевой пузырь;
    • из катетера первые15—30 мл мочи собирают в специальную посуду для утилизации, после чего заполняют на 1/3 — 1/2 стерильный одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой, в котором моча будет доставлена в лабораторию;

    — для уточнения локализации инфекции мочевой пузырь опорожняют катетером, промывают раствором антисептика (50 мл раствора, содержащего 40 мг неомицина и 20 мг полимиксина) и через 10 минут забирают пробы мочи. При инфекциях мочевого пузыря моча остается стерильной.

    Сбор проб мочи из участка подвздошной кишки, использованной для создания искусственного пузыря

    Показания к проведению исследования: жалобы больного на недомогание или гипертермия. , Необходимое оснащение: , Стерильный широкогорлый контейнер (банка).

    70%-м этиловый спирт;

    1—2%-м раствором йода;

    • Мыло.

    Стерильные марлевые салфетки (для женщин).

    Стерильный катетер. , Резиновые перчатки. , Взятие исследуемого материала:

    отсоединяют мочеприемное устройство и опорожняют его;

    • осторожно тампоном, смоченным 70%-м этиловым спиртом, а затем 1—2%-м раствором йода или другого имеющегося дезинфектанта, разрешенного к применению для этих целей, очищают отверстие;
    • удаляют избыток йода 70%-м этиловым спиртом для предохранения пациента от возможного ожога;
    • вводят катетер и собирают мочу в стерильный контейнер.

    Сбор проб мочи путем надлобковой пункции.

    Показания к проведению исследования: острая задержка мочи.

    Необходимое оснащение:

    Стерильный широкогорлый контейнер (банка).

    70%-м этиловый спирт.

    1—2%-м раствором йода.

    Игла для пункции.

    Резиновые перчатки.

    Взятие исследуемого материала:

    Наиболее достоверные результаты могут быть получены при надлобковой пункции мочевого пузыря, но эта процедура сопряжена с опасностью для больного и проводится только по клиническим показаниям. Моча, вытекающая из иглы, с соблюдением правил асептики, собирается в стерильный контейнер и доставляется в лабораторию.

    4.7 Отделяемое из мочеполовых органов мужчин и женщин

    4.7.1 Твердый шанкр, папулы, розеолы , Показания к проведению исследования: диагностика сифилиса. , Необходимое оснащение: , Стерильный физиологический раствор. , Гипертонический (10%) раствор хлористого натрия (не обязательно).

    70%-й этиловый спирт.

    Стерильный ватный тампон.

    Стерильные бактериологическая петля, шпатель (см. рис. 25) или лопаточка. , Предметное стекло. , Резиновые перчатки. , Взятие исследуемого материала:

    если пациент до обследования применял дезинфицирующие или прижигающие средства, то перед взятием материала необходимо рекомендовать ему в течение 12—24 часов прикладывать примочки с физиологическим раствором; за 2—3 часа до исследования наложить на 15—20 мин. примочку с гипертоническим (10%) раствором хлорида натрия, а затем вновь с изотоническим раствором этой же соли;

    • поверхность эрозии или язвы дважды осторожно протирают ватным тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором;
    • осторожно массируют поверхность очага одноразовой стерильной или прокаленной и остуженной бактериологической петлей, стерильным шпателем или лопаточкой до появления прозрачной или слегка опалесцирующей тканевой жидкости. Можно осторожно сдавить края эрозии или язвы руками в перчатках, для увеличения объема жидкости;
    • в случае начала кровотечения его останавливают с помощью марлевого тампона, увлажненного физиологическим раствором, и операцию повторяют; в материале не должно быть даже следов крови!

    из папул и розеол с помощью скальпеля путем скарификации можно получить тканевой сок;

    — небольшую каплю тканевой жидкости петлей переносят на идеально чистое обезжиренное предметное стекло без царапин, накрывают покровным стеклом и сразу же микроскопируют с помощью темнопольного микроскопа.

    4.7.2 Материал из уретры

    Показания к проведению исследования: острые и хронические заболевания уретры, половых органов, бесплодие. , Необходимое оснащение: , Теплая вода. , Стерильный физиологический раствор. , Стерильный ватный тампон.

    4.стерильные зонды-тампоны с волокнистой головкой индивидуально упакованные или в пробирке (тубсеры), стерильная бактериологическая петля, желобоватый зонд, маленькая ложечка Фолькмана.

    5.2 предметных стекла.

    Одноразовый стерильный тубсер с зондом-тампоном на проволочной оси (если предполагается бактериологическое исследование) или зонд-тампон на проволочной оси + стерильная пробирка.

    Стерильная пластиковая пастеровская пипетка или, при ее отсутствии, стерильная стеклянная пипетка с грушей и стерильная пробирка «Эппендорф» (для взятия смыва на трихомонады).

    Взятие исследуемого материала:

    1. перед взятием материала необходимо обмыть половые органы теплой водой или изотоническим раствором с помощью ватного тампона; удалить свободно стекающие выделения;

    2. материал для микроскопического исследования может быть получен при помощи специальных стерильных одноразовых зондов-тампонов с волокнистой головкой; эти зонды позволяют отбирать материал качественно и с минимальной травматизацией слизистой; для тех же целей можно использовать стерильные одноразовые или прокаленные и остуженные металлические бактериологические петли, желобоватые зонды, стеклянные глазные палочки, маленькую ложку Фолькмана; при обильном отделяемом материал собирают с помощью стеклянной палочки или края шлифованного по периметру стекла и сразу готовят мазки на предметных стеклах; в лабораторию должны быть направлены минимум 2 мазка от одного больного;

    3. при скудном отделяемом больному предлагают до исследования не мочиться в течение 4—8 часов, а затем массируют уретру, стараясь выдавить собравшийся в глубине секрет. Материал для бактериологического исследования забирают с помощью стерильного зонда-тампона в пробирке (тубсера) или стерильной одноразовой бактериологической петли, с целью предупреждения его контаминации сапрофитной микрофлорой, в большом количестве присутствующий в дистальном отделе уретры, в мочеиспускательный канал вводят стерильную ушную воронку, через которую собирают отделяемое из глубоких отделов. Если планируется посев с целью выделения гонококков, необходимо использовать транспортную систему со средой Эймс с активированным углем, а в случае ее отсутствия, использовать дакроновые тампоны, тампоны с альгинатом кальция либо ватные тампоны, импегрированные углем, поскольку хлопковая вата может быть токсичной для этих микроорганизмов. Тампон осторожно вводят в уретру и выдерживают в ней около 10 секунд; после извлечения его помещают в транспортную среду Эймс с углем (а в случае отсутствия — в иную пригодную транспортную среду); при использовании систем со средой Эймс с активированным углем материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 48 часов, при использовании иных транспортных сред — в течение 12 часов. Не допускается его охлаждение до температуры ниже 30°С; для исследования на хламидии, микоплазмы/уреаплазмы и вирусы материал лучше забирать с помощью специальных цитощеток. Больному рекомендуют помочиться непосредственно перед взятием материала, чтобы удалить избыток слизи, препятствующей проведению исследования; порядок дальнейших действий зависит от выбранного метода исследований:

    Маркировка биологического материала. Правила безопасности при его транспортировке. Оборудование и среды для взятия образцов. Отбор проб крови, правила проведения манипуляций. Посев на питательные среды. Инструкция по сбору мокроты и мочи пациентов.

    презентация